การยับยั้งการเกิดตัวเต็มวัยและอัตราการตายจำแนกตามระยะของสารยับยั้ง การสังเคราะห์ไคติน novaluron, triflumuron และ lufenuron ที่มีต่อยุงลายบ้าน (Aedes aegypti) พาหะนำโรคไข้เลือดออก
Main Article Content
บทคัดย่อ
สารควบคุมการเจริญเติบโตของแมลง (insect growth regulators: IGRs) กลุ่มยับยั้งการสังเคราะห์ไคติน (chitin-synthesis inhibitors: CSIs) ได้รับความสนใจเพิ่มขึ้นในการควบคุมยุง เนื่องจากมีคุณสมบัติในการรบกวนกระบวนการเจริญเติบโตของแมลงมากกว่าการออกฤทธิ์ที่ทำให้ตายอย่างรวดเร็ว การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินประสิทธิภาพในการกำจัดลูกน้ำ โดยยับยั้งการเป็นตัวเต็มวัย และเปรียบเทียบประสิทธิภาพในการควบคุมลูกน้ำยุงลายบ้าน (Aedes aegypti) ของสาร novaluron, triflumuron และ lufenuron ภายใต้สภาวะห้องปฏิบัติการ โดยใช้ลูกน้ำระยะที่ 3 สัมผัสสารในช่วงความเข้มข้น 0.05 - 6.25 µg/L และบันทึกอัตราการตายของลูกน้ำที่เวลา 24, 48 และ 72 ชั่วโมง และประเมินการยับยั้งการเกิดตัวเต็มวัยเพื่อคำนวณค่า EI50 และ EI90 ผลการศึกษาพบว่าไม่พบการตายของลูกน้ำในช่วง 24 ชั่วโมงแรกในทุกกลุ่มทดลอง และอัตราการตายยังคงอยู่ในระดับต่ำที่ 72 ชั่วโมง โดยมีค่าสูงสุดที่ 11.67 ± 3.51% สำหรับ novaluron, 8.33 ± 1.53% สำหรับ lufenuron และ 6.33 ± 2.08% สำหรับ triflumuron ที่ความเข้มข้นสูงสุด อย่างไรก็ตามสารทั้งสามชนิดสามารถยับยั้งการเกิดตัวเต็มวัยได้ 100% ที่ความเข้มข้น 6.25 µg/L โดย lufenuron มีประสิทธิภาพสูงสุด ให้ค่า EI50 ต่ำที่สุด (0.122 µg/L) และ EI90 เท่ากับ 1.638 µg/L รองลงมาคือ novaluron (EI50 = 0.156 µg/L; EI90 = 1.903 µg/L) และ triflumuron (EI50 = 0.228 µg/L; EI90 = 2.040 µg/L) และจากการวิเคราะห์อัตราการตายจำแนกตามระยะการเจริญเติบโตแสดงให้เห็นถึงความแตกต่างของสารแต่ละชนิดต่อระยะการตายของแมลง โดย lufenuron ส่งผลให้เกิดอัตราการตายในระยะลูกน้ำสูงที่สุด ขณะที่ novaluron เห็นผลเด่นชัดในระยะตัวโม่ง และ triflumuron พบอัตราการตายแบบกระจายทั้งระยะลูกน้ำและตัวโม่งผลการศึกษานี้ชี้ให้เห็นว่าการประเมินประสิทธิภาพโดยอาศัยอัตราการตายของลูกน้ำในระยะสั้นเพียงอย่างเดียวอาจนำไปสู่การประเมินค่าประสิทธิภาพของสารกลุ่มยับยั้งการสังเคราะห์ไคตินต่ำกว่าความเป็นจริง โดยจากผลการศึกษานี้สรุปว่า lufenuron แสดงประสิทธิภาพสูงที่สุด ซึ่งสนับสนุนศักยภาพในการนำไปประยุกต์ใช้ในโปรแกรมควบคุมยุงต่อไป
Article Details
เอกสารอ้างอิง
World Health Organization. Vector-borne diseases. Geneva: WHO; 2020.
Kraemer M, Sinka M, Duda K, et al. The global distribution of the arbovirus vectors Aedes aegypti and Aedes albopictus. eLife. 2015;4:e08347.
Bhatt S, Gething P, Brady O, et al. The global distribution and burden of dengue. Nature. 2013;496:504-507.
Guzman M, Harris E. Dengue. Lancet. 2015;385:453-465.
Moyes C, Vontas J, Martins A, et al. Contemporary status of insecticide resistance in Aedes aegypti. PLoS Negl Trop Dis. 2017;11:e0005625.
Nkya T, Akhouayri I, Kisinza W, David JP. Impact of environment on mosquito response to insecticides. Infect Dis Poverty. 2013;2:20.
Merzendorfer H. Chitin synthesis inhibitors: old molecules and new developments. Insect Sci. 2013;20:121-138.
Tunaz H, Uygun N. Insect growth regulators for insect pest control. Turk J Agric For. 2004;28:377-387.
Mulla M, Thavara U, Tawatsin A, et al. Mosquito larval control with insect growth regulators. J Am Mosq Control Assoc. 2003;19:104-109.
Farnesi L, Martins A, Valle D, Rezende GL. Embryonic development of Aedes aegypti. PLoS One. 2012;7:e44614.
World Health Organization. Guidelines for laboratory and field testing of mosquito larvicides. Geneva: WHO; 2005.
Farnesi L, Brito J, Linss J, et al. Physiological and morphological aspects of Aedes aegypti developing larvae: effects of the chitin synthesis inhibitor novaluron. PLoS One. 2012;7:e30363.
Belinato T, Martins A, Lima J, et al. Effect of the chitin synthesis inhibitor triflumuron on the development, viability and reproduction of Aedes aegypti. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2009;104:43-47.
Belinato T, Martins A, Lima J, et al. Effect of triflumuron on Aedes aegypti, Aedes albopictus and Culex quinquefasciatus. Parasit Vectors. 2013;6:83.
Martins A, Belinato T, Lima J, et al. Chitin synthesis inhibitor effect on Aedes aegypti populations susceptible and resistant to temephos. Pest Manag Sci. 2008;64:676-680.
Salokhe S, Deshpande S, Mukherjee S. Evaluation of lufenuron (Match®) for control of Aedes aegypti. Parasitol Res. 2012;111:1325-1329.
Gonzalez P, Harburguer L, Licastro S, et al. Lufenuron can be transferred by gravid Aedes aegypti females to breeding sites and affect their fertility, fecundity and blood intake capacity. Parasit Vectors. 2020;13:250.
Fansiri T, Pongsiri A, Lam-Phua SG, et al. Impact of insect growth regulators on Aedes aegypti populations in Thailand. Acta Trop. 2022;236:106695.
Herath J, Abeyasundara H, de Silva WAPP, et al. Efficacy of novaluron against dengue vectors. Sci Rep. 2024;14:1988.
Devine G, Killeen G. The potential of a new approach for malaria vector control based on the principles of autodissemination. Malar J. 2010;9:17.