ระดับ Adenosine Diaminase Activity ในภาวะน้ำเยื่อหุ้มปอดชนิด Exudative Lymphocytic Predominated ในโรงพยาบาลมหาราชนครราชสีมา
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ภาวะน้ำในเยื่อหุ้มปอด ชนิด exudative lymphocytic predominate ยังมีปัญหาในการวินิจฉัยและค่า adenosine diaminase activity (ADA) ถูกนำมาใช้เพื่อการวินิจฉัยแยกโรคระหว่างวัณโรคเยื่อหุ้มปอดและมะเร็งที่กระจายมาเยื่อหุ้มปอด แต่ไม่มีการประเมินประโยชน์ทางคลินิกในโรงพยาบาลมหาราชนครราชสีมา วัตถุประสงค์: เพื่อศึกษาประโยชน์ทางคลินิกของการส่งตรวจ ADA ในน้ำเยื่อหุ้มปอดชนิด exudative lymphocytic predominate เพื่อการวินิจฉัยแยกโรคระหว่างวัณโรคเยื่อหุ้มปอดและมะเร็งที่แพร่มาที่เยื่อหุ้มปอดของผู้ป่วยที่พักรักษาตัวในโรงพยาบาลมหาราชนครราชสีมา ผู้ป่วยและวิธีการ: ศึกษาย้อนหลังแบบพรรณนาและเปรียบเทียบจากผู้ป่วยที่พักรักษาตัวในกลุ่มงานอายุรกรรม โรงพยาบาลมหาราชนครราชสีมา ตั้งแต่ 1 มกราคม 2548-30 มิถุนายน 2548 อาศัยข้อมูลจากเวชระเบียนผู้ป่วยที่ตรวจพบน้ำในเยื่อหุ้มปอดเป็นแบบ exudative, มีเม็ดเลือดขาวชนิด lymphocyte เด่นและได้รับการวินิจฉัยเบื้องต้นว่าเป็นวัณโรคเยื่อหุ้มปอด ผลการศึกษา: ผู้ป่วยจำนวน 47 คน ได้รับการวินิจฉัยเป็นวัณโรคเยื่อหุ้มปอด 35 คน, เปลี่ยนการวินิจฉัยเป็นมะเร็งแพร่กระจายมาเยื่อหุ้มปอด 11 คน และพยาธิเยื่อหุ้มปอด 1 คน ได้รับการส่งตรวจ ADA และสามารถตามผลได้ 32 คน ระดับของ ADA ในวัณโรคเยื่อหุ้มปอดสูงกว่าอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (p=0.005) พบว่า ADA ใน TBP มีค่า < 40 IU/mL และ ADA ใน MPE มีค่า > 60 IU/mL แต่พบได้น้อยมาก ภาวะพยาธิเยื่อหุ้มปอดพบมี ADA > 60 IU/mL ได้ ความไวของการวินิจฉัยมะเร็งแพร่กระจายมาเยื่อหุ้มปอดโดยการตรวจเซลล์วิทยาและพยาธิวิทยา พบร้อยละ 50.0 และ 27.3 ตามลำดับ สรุป: การส่ง ADA เพื่อช่วยในการวินิจฉัยแยกโรคระหว่างวัณโรคเยื่อหุ้มปอดและมะเร็งแพร่กระจายมาเยื่อหุ้มปอดอาจจะมีประโยชน์ โดยหากระดับ ADA> 60 IU/mL มีโอกาสเป็นวัณโรคเยื่อหุ้มปอดมากกว่า
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
References
Allen JC, Apicella MA. Experimental pleural effusion as a manifestation of delayed hypersensitivity to tuberculin PPD. J Immunol 1968; 101: 481-7.
Salazar-Lezama M, Quiroz-Rosales H, Banales-Mendez JL, Sanchez-Guzman M, Villarreal-Velarde H, Baez-Saldana R, et al. Diagnostic methods of primary tuberculous pleural effusion in a region with high prevalence of tuberculosis. A study in Mexican population. Rev Invest Clin 1997; 49: 453-6.
Light RW. Clinical practice. Pleural effusion. N Engl J Med 2002; 346: 1971-7.
Sharma SK, Suresh V, Mohan A, Kaur P, Saha P, Kumar A, et al. A prospective study of sensitivity and specificity of adenosine deaminase estimation in the diagnosis of tuberculosis pleural effusion. Indian J Chest Dis Allied Sci 2001; 43: 149-55.
Diacon AH, Van de Wal BW, Wyser C, Smedema JP, Bezuidenhout J, Bolliger CT, et al. Diagnostic tools in tuberculous pleurisy: a direct comparative study. Eur Respir J 2003; 22: 589-91.
Lee YC, Rogers JT, Rodriguez RM, Miller KD, Light RW. Adenosine deaminase levels in nontuberculous lymphocytic pleural effusions. Chest 2001; 120: 356-61.
Jimenez Castro D, Diaz Nuevo G, Perez-Rodriguez E, Light RW. Diagnostic value of adenosine deaminase in nontuberculous lymphocytic pleural effusions. Eur Respir J 2003; 21: 220-4.
Valdes L, Alvarez D, San Jose E, Juanatey JR, Pose A, Valle JM, et al. Value of adenosine deaminase in the diagnosis of tuberculous pleural effusions in young patients in a region of high prevalence of tuberculosis. Thorax 1995; 50: 600-3.
Valdes L, San Jose E, Alvarez D, Valle JM. Adenosine deaminase (ADA) isoenzyme analysis in pleural effusions: diagnostic role, and relevance to the origin of increased ADA in tuberculous pleurisy. Eur Respir J 1996; 9: 747-51.
Valdes L, Alvarez D, San Jose E, Penela P, Valle JM, Garcia-Pazos JM, et al. Tuberculous pleuris: a study of 254 patients. Arch Intern Med 1998; 158: 2017–21.
Villena V, Lopez-Encuentra A, de Pablo A, Echave-Sustaeta J, Martin-Escribano P, Orturio-de-Solo B, et al. Interferon-gamma in 388 immunocompromised and immunocompetent patients for diagnosing pleural tuberculosis. Eur Respir J 1996; 9: 2635–9.
Sharma SK, Banga A. Diagnostic utility of pleural fluid IFN-gamma in tuberculosis pleural effusion. J Interferon Cytokine Res 2004; 24: 213-7.
Lassence A, Lecossier D, Pierre C, Cadranel J, Stern M, Hance AJ. Detection of mycobacterial DNA in pleural fluid from patients with tuberculous pleurisy by means of the polymerase chain reaction; comparison of two protocols. Thorax 1992; 47: 265–9.
Querol JM, Minguez J, Garcia-Sanchez E, Farga MA, Gimeno C, Garcia-deLomas J. The diagnosis of pleural tuberculosis by polymerase chain reaction. Am J Respir Crit Care Med 1995; 152: 1977-81.
Villena V, Rebollo MJ, Aguado JM, Galan A, Lopez Encuentra A, Palenque E. Polymerase chainreaction for the diagnosis of pleural tuberculosis in immunocompromised and immunocompetent patients. Clin Infect Dis 1998; 26: 212-4.
Hasaneen NA, Zaki ME, Shalaby HM, EL-Morsi AS. Polymerase chain reaction of pleural biopsy is a rapid and sensitive method for the diagnosis of tuberculous pleural effusion. Chest 2003; 124: 2105-11.
Hua CC, Chang LC, Chen YC, Chang SC. Proinflammatory cytokines and fibrinolytic enzymes in tuberculous and malignant pleural effusions. Chest 1999; 116: 1292-6.
Lin FC, Chen YC, Chen FJ, Chang SC. Cytokines and fibrinolytic enzymes in tuberculous and parapneumonic effusions. Clin Immunol 2005; 116: 166-73.
Chung CL, Chen YC, Chang SC. Effect of repeated thoracocenthesis on fluid characteristics, cytokines, and fibrinolytic activity in malignant pleural effusion. Chest 2003; 123:1188-95.
Wong CF, Yew WW, Leung SK, Chan CY, Hui M, Au- Yeang C, et al. Assay of pleural fluid interleukin-6, tumour necrosis factor-alpha and interferon-gamma in the diagnosis and outcome correlation of tuberculous effusion. Respir Med 2003; 97: 1289-95.