การตรวจเซลล์โดยวิธีตัดแปะและวิธีการตรวจชิ้นเนื้อแช่แข็งในการวินิจฉัยรอยโรคของเต้านม
Main Article Content
บทคัดย่อ
ภูมิหลัง: วิธีการตรวจชิ้นเนื้อแช่แข็งเป็นวิธีการที่ได้รับการยอมรับว่ามีความแม่นยำสูงในการวินิจฉัยโรคระหว่างผ่าตัด ความแม่นยำของการตรวจชิ้นเนื้อแช่แข็งขึ้นกับประเภทของชิ้นเนื้อที่ส่งตรวจและพยาธิแพทย์ที่มีประสบการณ์ในปัจจุบันได้มีการนำการตรวจเซลล์โดยวิธีตัดแปะมาใช้วินิจฉัยโรคระหว่างผ่าตัดมากขึ้น เนื่องจากความรวดเร็วเตรียมง่าย และประหยัด มีความแม่นยำในระดับใกล้เคียงกับการตรวจชิ้นเนื้อแช่แข็ง กลุ่มงานพยาธิวิทยากายวิภาค โรงพยาบาลสระบุรี ได้นำวิธีการทั้งสองมาใช้ในการวินิจฉัยโรคระหว่างผ่าตัด วัตถุประสงค์: เพื่อเปรียบเทียบความแม่นยำของการวินิจฉัยรอยโรคของเต้านมด้วยการตรวจชิ้นเนื้อแช่แข็งและวิธีตัดแปะ เปรียบเทียบกับการตรวจชิ้นเนื้อตามปกติ วิธีการศึกษา: ศึกษาชิ้นเนื้อของเต้านมจำนวน 128 รายที่ส่งตรวจระหว่างผ่าตัด ณ กลุ่มงานพยาธิวิทยากายวิภาค โรงพยาบาลสระบุรี ระหว่างเดือนเมษายน 2540 ถึงเดือนสิงหาคม 2546 โดยชิ้นเนื้อทุกรายได้รับการตรวจชิ้นเนื้อตามปกติ, การตรวจชิ้นเนื้อแช่แข็งและตรวจเซลล์โดยวิธีตัดแปะ จากนั้นนำผลการวินิจฉัยที่ได้มาหาค่าความเเม่นยำ ความไว และความจำเพาะ ผลการศึกษา: ความแม่นยำ ความไวและความจำเพาะของการตรวจเซลล์โดยวิธีตัดแปะ เปรียบเทืยบกับการตรวจชิ้นเนื้อตามปกติเป็นร้อยละ 94.9, 94.1 และ 96.9 ตามลำดับ ขณะที่การตรวจชิ้นเนื้อแช่แข็งเป็นร้อยละ 96.5,95.5 และ 100 ตามลำดับ เมื่อใช้ทั้งสองวิธีร่วมกันได้เป็นร้อยละ 98.4,97.8 และ 100 ตามลำดับ สรุป: การตรวจชิ้นเนื้อแช่แข็งและการตรวจเซลล์โดยวิธีตัดแปะของรอยโรคที่เต้านมมีความแม่นยำสูง และทั้งสองวิธีจะช่วยให้การวินิจฉัยโรคได้แม่นยำมากขึ้น
Article Details

อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เอกสารอ้างอิง
Bianchi S, Palli D, Ciatto S, Galli M, Giorgi D, Vezzosi V, et al. Accuracy and reliability of frozen section diagnosis in a series of 672 nonpalpable breast lesion. Am J Clin Pathol 1995; 103: 199-205.
Ackerman LV, Ramirez GA. The indications for and limitations of frozen section diagnosis: A review of 1,269 consecutive frozen sections. Br J Surg 1959; 46: 336-50.
Nazakawa H, Rosen P, Lane N, Lattes R. Frozen section experience in 3000 cases: Accuracy, limitations, and value in residency training. Am J Clin Pathol 1968: 49: 41-51.
Holaday WJ, Assor D. Ten thousand consecutive frozen sections: A retrospective study focusing on accuracy and quality control. Am J Clin Pathol 1974; 61: 769-71.
Rosen P. Frozen section diagnosis of beast lesions: Recent experience with 556 consecutive biopsies. Ann Surg 1978; 187: 17-9.
Kaufman Z, Lew S, Griffel B, Dinbar A. Frozen section diagnosis in surgical pathology. Cancer 1986;57:377-9.
Sparkman RS. Reliability of frozen section in the diagnosis of breast lesions. Ann Surg 1962; 155: 924-34.
Oneson RH, Minke JA, Silverberg SG. Intraoperative pathologic consultation: An audit of I,000 recent consecutive cases. Am J Surg Pathol 1989; 13: 237-43.
Dahlin DC. Seventy-five years experience with frozen section at Mayo Clinic. Mayo Clinic Proc 1980; 55: 721-3.
Scucchi LF, Di Stefano D, Cosentino L, Vecchione A. Value of cytology as an adjunctive intraoperative diagnostic method. Acta Cytol 1997; 41: 1489-96.
Blaustein PA, Silverberg SG. Rapid cytologic examination of surgical specimens. Pathol Annu 1977; 12:251-78.
Suen K, Wood W, Syed A, Quenville N, Clement P. Role of imprint cytology in intraoperative diagnosis: Value and limitations. J Clin Pathol 1978; 31: 328-37.
Marvec P. Cytologic diagnosis from tumor tissue using the "Quick method" during operation. Acta Cytol. 1967; 11: 229-30.
Owings RM. Rapid cytologic examination of surgical specimens: A valuable technique in the surgical pathology laboratory. Hum Pathol 1984; 15: 605-14.
Tribe CR: Cytological diagnosis of breast tumors by the imprint method. J Clin Pathol 1965;18:31-9.
Tokai C, Szombathelyi L. Intraoperative cytodiagnosis. Acta Cytol 1969; 13: 2-3.
Yoshi Y, Takhashi J, Yamaoka Y,Kasugai T. Significance of imprint smear in cytologic diagnosis of malignant tumor of the stomach. Acta Cytol 1970; 14: 249-53.
Aust R, Stahle I,Stenkvist B. The imprint method for the cytodiagnosis of lymphadenopathies and tumors of the head and neck. Acta Cytol 1971; 15: 123-7.
Kontozoglou TE, Cramer HM. The advantages of intraoperative cytology. Analysis of 215 smears and review of the literature. Acta Cytol 1991; 35: 154-64.
Lee TK. The value of imprint cylogy in tumor diagnosis: a retrospective study of 522 cases in Northern China. Acta Cytol 1982; 26: 169-71.
Pilar P, Ruberstone A. A correlation of breast imprints (stained by the method of Papanicolaou) and the tissue sections. Acta Cytol 1968; 12: 462-72.
Webb AJ. The diagnostic cytology of breast carcinoma. Br J Surg 1970; 57: 259-64.
Tribe CR. A comparison of rapid methods including imprint cytodiagnosis for the diagnosis of breast tumors. J Clin Pathol 1973; 26: 273-7.
Veneti S, Mouzaka LT, Toufexi H. Xenitides J, Anastasiadis P. Imprint cytology: A rapid, reliable method of diagnosing breast malignancy. Acta Cytol 1996; 40: 649-52.
Sakai Y, Lauslahti K. Comparison and analysis of the results of cytodiagnosis and frozen section during operation. Acta Cytol 1969; 13: 359-68.
Helpap B, Tschubel K. The significance of imprint cytology in breast biopsy diagnosis. Acta Cytol 1978;22: 133-7.
Dutta SK, Chattopadhyaya A, Roy S. Evaluation of fine needle aspiration and imprint cytology in the early diagnosis of breast lesions with histopathological correlation. J Indian Med Assoc. 2001; 99: 421-3.
Koshi S, Goligher J, Gottlieb M, Bradley G, Khan M. Reyes R, et al. The accuracy ofimprint cytology of breast core biopsy under ultrasound guidance. Breast Cancer Res 2002; 4(Suppl 1): 14.
Shabaik RH, Cox C, Clark R, Reintgen D, Humphrey E, Nicosia S. Imprint cytology of needlelocalized breast lesion. Acta Cytol 1993; 37: 10-5.
Scopa CD, Melachrinou M, Apessou D, Bonikos D. Tissue imprints in surgical pathology: a rapid intraoperative diagnostic aid. Diagn Cytopathol 1990; 6: 5-8.
Champakam NS, D'Souza V, Kamat JR, Parashar SK. Imprint cytology in the diagnosis of breast tumor. Int Surg 1982; 67(4 Suppl): 425-6.
Chonmaitri IS. Imprint cytologic examination as an adjunct to frozen section. J Med Assoc Thai 1993; 76:458-64.